Zellviabilitäts-Rechner

Ermittle den Prozentsatz viabler (lebender) Zellen in einer Suspension vor Transfektionen, Passagieren oder Einfrieren.

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Viabilitäts-Zählungen

Gib die Anzahl lebender und toter Zellen ein.

Prozentuale Zellviabilität

90,0 %

* Eine gesunde Kultur hat meist eine Viabilität über 90 %.

Gesamtzellzahl 200 Zellen
Prozentsatz toter Zellen 10,0 %
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Zähldauer beachten

Zähle die Zellen innerhalb von 3–5 Minuten nach Zugabe von Trypanblau.

Vergleichstabelle gängiger Zellviabilitäts-Assays

Assay-Name Wirkprinzip / Ziel Messmethode Hauptvorteil
Trypanblau-Ausschluss Zellmembran-Integrität Lichtmikroskop / Automatische Zählkammer Schnell und kostengünstig
MTT / MTS-Assay Mitochondriale Reduktase-Aktivität Absorption (570 nm) High-Throughput 96-Well-Screening
Calcein-AM / EthD-1 Esterase-Aktivität + DNA-Bindung Fluoreszenzmikroskopie / Durchflusszytometrie Unterscheidet frühe Apoptose
ATP-Lumineszenz (CellTiter-Glo) Intrazelluläre ATP-Menge Luminometer Hohe Sensitivität & linearer Bereich

Berechnungsmethodik & Formeln

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Formel für Zellviabilität

Viabilität (%) = [Lebend / (Lebend + Tot)] × 100

Bestimmt den Anteil intakter, lebensfähiger Zellen.

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Prozentsatz toter Zellen

Tot (%) = [Tot / (Lebend + Tot)] × 100

Misst den Anteil abgestorbener Zellen in der Probe.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

Was gilt als eine gute Zellviabilität?

Für Zellkultur-Experimente gilt eine Viabilität über 90 % als optimal. Werte unter 80 % beeinträchtigen Transfektionseffizienz und Kryokonservierung.

Wie funktioniert die Trypanblau-Ausschlussmethode?

Trypanblau dringt nur durch beschädigte Zellmembranen ein. Intakte lebende Zellen schließen den Farbstoff aus und bleiben hell, während tote Zellen blau gefärbt werden.

Warum müssen Trypanblau-Messungen zügig erfolgen?

Nach längerer Inkubation (>5–10 Min.) nehmen auch lebende Zellen den Farbstoff auf, was zu falsch-niedrigen Viabilitätswerten führt.