DNA-Ligations-Rechner

Berechne die exakte Masse an Insert-DNA für eine optimierte Ligationsreaktion zur Maximierung der Klonierungseffizienz.

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Reaktionsparameter

Gib Vektorgröße, Vektormasse, Insertgröße und Molverhältnis ein.

Benötigte Insert-Masse

75,0 ng

* Stöchiometrische Menge für optimale Klonierung.

Gesamte DNA im Ligationansatz 175 ng
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Klebrige vs. Glatte Enden

Verwende 3:1 für klebrige Überhänge. Erhöhe auf 5:1 oder 10:1 bei glatten Enden.

Empfohlene Ligations-Bedingungen Referenztabelle

Ligationstyp Empfohlenes Molverhältnis (Insert:Vektor) Inkubationstemp. & Dauer Dephosphorylierung nötig?
Klebrige Enden (Doppelschnitt) 3 : 1 16 °C über Nacht OD. 25 °C für 10 Min. Nein (Inkompatible Enden)
Klebrige Enden (Einfachschnitt) 3 : 1 oder 5 : 1 16 °C über Nacht Ja (CIP / rSAP empfohlen)
Glatte Enden (EcoRV, SmaI, etc.) 5 : 1 oder 10 : 1 16 °C über Nacht OD. 20 °C für 2 Std. Ja (Hohes Selbstreligationsrisiko)
TA-Klonierung (PCR-Produkte) 3 : 1 14–16 °C über Nacht Nein (T-Überhang-Vektor)

Berechnungsmethodik & Formeln

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Formel für Insert-Masse

Insert (ng) = Vektor (ng) × [Insert (kb) / Vektor (kb)] × Verhältnis

Erhält das stöchiometrische Gleichgewicht basierend auf der Basenpaarlänge.

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Gesamt-DNA Menge

Gesamtmasse (ng) = Vektormasse (ng) + Insertmasse (ng)

Hält die Gesamt-DNA im Ansatz unter 200 ng pro 20 μL für maximale Transformationseffizienz.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

Welches Molverhältnis von Insert zu Vektor ist optimal?

Ein Molverhältnis von 3:1 (Insert zu Vektor) ist der Standard für klebrige Enden (Sticky Ends). Bei glatten Enden (Blunt Ends) wird ein Verhältnis von 5:1 oder 10:1 empfohlen.

Wie wird die benötigte Insert-Masse berechnet?

Insert-Masse (ng) = Vektormasse (ng) × [Insert-Länge (kb) / Vektor-Länge (kb)] × Molverhältnis.

Warum muss der Vektor dephosphoryliert werden?

Das Entfernen der 5'-Phosphatgruppen von einfach geschnittenen Vektoren durch alkalische Phosphatase (CIP/rSAP) verhindert die Selbstreligation ohne Insert.